TM
AP Biology Lab 12
Dissolved Oxygen
& Primary Productivity
Lab Activity
Student Study Guide
BACKGROUND
Oxygen, found in both aquatic and terrestrial environments, is necessary to the metabolic processes of virtually all life forms. Dissolved
oxygen, therefore, is an important indicator of water quality.
Eutrophic:
“well nourished”, an environment where high nutrient
concentrations lead to high
plant growth.
Oligotrophic:
An environment where low
nutrient concentration leads
to low plant growth.
Aquatic and terrestrial environments do not have the same ability to
hold oxygen. If an equal volume of air and very cold water were compared, it would be found that the air contained over 95% more oxygen than the water. In addition, water’s ability to hold dissolved oxygen rapidly decreases as the temperature of the water increases. Because water does not hold oxygen as efficiently as air, respiration and
organic degradation easily deplete its dissolved oxygen concentration. The only way to avoid complete anoxia is for oxygen to be replenished from the atmosphere and from the biological activity in the
aquatic environment.
Untreated emissions from sewage treatment plants are often responsible for oxygen depletion. The organic composition of this waste requires a great deal of oxygen as it decomposes; areas near municipal
treatment facilities are often monitored for their dissolved oxygen
content because of this.
Other factors also affect the dissolved oxygen content of a body
of water:
Temperature: As the temperature of the water increases, the concentration of the dissolved oxygen decreases. As a result, there is a seasonal fluctuation in dissolved oxygen concentration in a body
of water.
Wind: Oxygen is mixed into the water as wind blows across the surface. On windless nights, oxygen depletion can be so severe that it
can cause substantial fish kills.
Turbulence: As water runs its course in a stream or riverbed, oxygen
is mixed in at the water flow and is agitated by various obstructions
such as rocks, fallen trees, and waterfalls. A great deal of variation in
dissolved oxygen concentration can be observed through dissolved
oxygen measurements taken along a course of a stream or river.
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Trophic State: The amount of nutrients, such as calcium or nitrates,
in the water determines how much life can be sustained in the aquatic
environment, which affects the amount of oxygen used or released in
the water. There are two classifications: eutrophic or oligotrophic. An
eutrophic body of water is one that has a fluctuating dissolved oxygen content from varying amounts of activity of the life in the body of
water, and is always rich in nutrients. An oligotrophic body of water
is always rich in oxygen content but is poor in plant nutrients. The
oxygen content is constant because there isn’t much variation in life
activity that could cause serious depletion.
DID YOU KNOW?
The most productive systems,
in terms of primary production, in the world are: open
oceans, tropical rainforests,
savannas, and tropical seasonal forests.
Although standards for dissolved oxygen vary, it has been found that
a concentration of dissolved oxygen less than 4 ppm (parts per million) is stressful to most forms of aquatic life. The ideal range for an
adequate game fish population of bass, pike, or walleye, for example,
is about 8 to 15 ppm.
Primary Production
Energy accumulated by plants is termed production or, more specifically, primary production, since it is the first and basic form of energy
storage. All production in an ecosystem stems from the energy in organic substances that autotrophs, or primary producers, create from
inorganic raw materials. The flow of energy through a community
starts with the fixation of sunlight by plants (photosynthesis), which in
itself demands the expenditure of energy. All of the sun’s energy that is
assimilated, or the total photosynthesis that occurs, is termed gross primary production. Since plants, like other organisms, must overcome the
tendency of energy to disperse (entropy), free energy (available to do
work) must be expanded for production as well as for other biological
functions such as maintenance and reproduction. The energy required
for this is provided by a reverse of the photosynthetic process called
respiration. The energy remaining after respiration and stored as organic matter is termed net primary production, or plant growth.
Primary Production Measured by the Oxygen Method
DID YOU KNOW?
The primary production of
the world’s oceans has been
measured and mapped in
considerable detail using the
oxygen method.
Two bottles with a given concentration of phytoplankton are suspended at the depth from which the samples were obtained. The
“dark” bottle is wrapped in electrical tape, aluminum foil, etc., to exclude light; the “light” bottle is clear. A quantity of oxygen proportional to the total organic matter fixed (gross production) is produced
by photosynthesis in the light bottle. At the same time, some of the
oxygen is being utilized in respiration. The amount of oxygen left is
proportional to the amount of fixed organic matter remaining after
respiration (net production). The quantity of oxygen in the light bottle indicates the net photosynthesis, or net primary production.
In the dark bottle, oxygen is utilized but not produced. By determining the initial oxygen measurement taken from a control bottle, and
subtracting it from the amount left at the end of the run, usually 24
hours, allows you to determine the quantity of oxygen utilized
(respiration). The amount of oxygen in the light bottle added to the
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amount used in the dark bottle provides an estimate of total photosynthesis, or gross production.
Respiration = Initial Bottle – Dark Bottle
Net Primary Production = Light Bottle – Initial Bottle
Gross Production = (Light Bottle – Initial Bottle) + (Initial Bottle –
Dark Bottle)
This equation can be shortened to read:
Gross Production = Light Bottle – Dark Bottle
but without the Initial Bottle test neither Respiration or Net Primary
Production can be learned.
Limnologists are scientists
who study water movements
(currents, waves, seiches),
light, heat, sedimentation
rates, and other physical phenomena in lakes and other
inland waters.
In a modified version of this method, the bottles can represent the
whole aquatic ecosystem, with the light bottle representing the daytime and the dark bottle representing the night. The oxygen content
of the water is measured every two to three hours over a 24-hour period, providing the rise and fall of oxygen during the day and night
that can be plotted on a diurnal curve.
Still another modification of the light and dark bottle method suited
for terrestrial communities involves measuring the amount of carbon
dioxide produced. A transparent plastic bag is placed over a sample.
Air is drawn through the enclosure and passed over carbon dioxideabsorbent materials. The same procedure is conducted with a dark
plastic bag. The amount of carbon dioxide produced under the dark
bag is a measure of respiration; under the transparent bag is the
quantity of carbon dioxide equivalent to the amount of photosynthesis minus the amount of respiration. The two results added together
indicate gross production.
Conversion of Oxygen Data to Carbon
Limnologists prefer to express primary production in terms of carbon
fixed rather than oxygen evolved. Oxygen values, therefore, are often
converted to carbon. One method assumes that 1 mole of oxygen is
released for each mole of carbon dioxide that is fixed, as implied in
the simple photosynthetic formula. The molecular weights, 44 for carbon dioxide and 32 for oxygen, are used to convert oxygen evolved to
carbon dioxide consumed: 44/32 = 1.375.
A measure of oxygen production over time provides a means of calculating the amount of carbon that has been found in organic compounds over a period of time. For each milliliter of oxygen produced,
approximately 0.536 milligrams of carbon has been fixed.
Oxygen Cycle
Oxygen, free in the atmosphere and dissolved in water, is a byproduct of photosynthesis. Life-forms (microorganisms, plants, animals)
use oxygen in respiration and return it to the air and water in the
form of raw carbon dioxide. The carbon dioxide is utilized by various
microbes and green plants as an essential raw material for carbohydrate synthesis.
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Photosynthesis
Plants and microorganisms such as anaerobic phototrophic bacteria,
cyanobacteria, green protists, etc., sustain all life on earth by transforming the energy of sunlight and carbon dioxide into food and
oxygen:
12H2O + 6CO2
Visible light
C6H12O6 + 6O2 + 6H2O
Chlorophyll
Dissolved Gases
DID YOU KNOW?
Every time you open a bottle
of soda pop, you see Henry’s
Law in action. In releasing the
pressure in the bottle, you
lower the solubility of CO2,
hence it comes out of solution
as bubbles.
Surface waters in contact with a mixture of gases and water vapor
absorb some of its components. There are five important gases dissolved in aquatic environments; all have biological and physiochemical functions, but they differ from one another in behavior and origin.
Nitrogen, oxygen, and carbon dioxide are especially important; nitrogen and oxygen are the most abundant constituents of the atmosphere, about 78% and 21% respectively, at sea level. Water vapor is
present in varying amounts up to 3% by volume.
Some oxygen goes into solution if the water is undersaturated. It is
about one-fourth as abundant in the air as nitrogen but is more than
twice as soluble. The amount of oxygen absorbed depends on temperature, salinity, and pressure. Cold water absorbs more oxygen
than does warm water, salinity decreases solubility, and pressure increases it.
Most gases obey Henry’s Law, which states that at a constant temperature, the amount of gas absorbed by a given volume of liquid is
proportional to the pressure in atmospheres that the gas exerts. Carbon dioxide, however, may combine with various cations upon entering natural waters to become more abundant than the precepts of
Henry’s Law dictate. It is found both in free and combined states.
With the following formula, the amount of an atmospheric component found dissolved in an aquatic environment can be predicted.
c=Kxp
c = Concentration of the gas that is absorbed
K = Solubility factor (differs from gas to gas)
p = Partial pressure of the gas
Effect of Altitude: With an increase in altitude to a more rarefied atmosphere, the value of p in the formula decreases. Therefore, solubility, expressed as the amount of gas dissolved at equilibrium with the
air, lessens.
Effect of Temperature: With p constant and temperature altered, the
solubility decreases as temperature rises. The inverse relationship
demonstrates that cold water can hold more gas in solution than
warm water.
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Effect of Salinity: The occurrence of various minerals in solution
lowers the solubility of the gas. The reduction of saturation values of
gases in seawater, when compared with distilled water, is approximately 20%. Seawater is about 35% salinity; converted to parts per
million or milligrams per liter, it is about 35,000. Inland waters are
“pure”, with 0% salinity in parts per thousand.
Relative Saturation: Gas saturation is quantified on the basis of equilibrium at the boundary of the surface of the water and the atmosphere. Gas solubility is the ratio of its concentration in the solution to
its concentration above the solution.
Assaying Dissolved Oxygen in Aqueous Solutions
DID YOU KNOW?
Domestic sewage refers to
waste water containing impurities from households. When
sewage enters a body of water, microorganisms begin to
decompose the organic material. Oxygen is consumed as
microorganisms use it in their
metabolism, which can
quickly deplete the available
oxygen in the water.
It is possible to determine the amount of oxygen in water with the
Winkler titrametric method. The procedure involves the addition of
alkaline iodide and manganous sulfate to a water sample. Manganous hydroxide is produced and, upon acidification, is converted
to a manganese compound by the oxygen in the water sample. The
compound immediately reacts with the iodide to release iodine,
which colors the water a dark yellow. The quantity of free iodine is
equivalent to the amount of oxygen in the sample. The amount of iodine is quantified by titration with sodium thiosulfate until an endpoint is reached, signified by the sample losing its color. The Winkler
method’s precision range is 0.1 to 0.6%.
Steps in Winkler Method
1.
Production of manganous hydroxide in the water sample to
which manganous sulfate is introduced when KOH plus KI
are added:
MnSO4 + 2KOH
2.
Oxidation of manganous hydroxide to manganic hydroxide by
the dissolved oxygen in the sample:
2Mn(OH)2 + O2 + 2H2O
3.
2Mn(SO4)2 + 8H2O
Replacement of iodine in an iodide (KI) by sulfate, releasing
free iodine:
2Mn(OH)4 + 4KI
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2Mn(OH)4
Conversion of manganic hydroxide to manganic sulfate when
concentrated sulfuric acid is added:
2Mn(OH)4 + 4H2SO4
4.
Mn(OH)2 + K2SO4
5
2MnSO4 + 2K2SO4 + 2I2
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5.
Titration of the iodine solution with sodium thiosulfate until all
free iodine combines into sodium iodide. Often, starch indicator
is added to the sample to make it easier to see the titration endpoint. The endpoint is marked by the disappearance of the
purple color:
4Na2S2O3 + 2I2
2Na2S4O6 + 4NaI
Procedure Notes
DID YOU KNOW?
Fish in waters containing excessive dissolved gases may
suffer from ”gas bubble disease”. The bubbles block the
flow of blood through blood
vessels causing death.
All steps involving sulfamic acid should be performed by
the instructor. Wear appropriate personal protection
equipment, including chemical splash goggles, face
shield, nitrile rubber gloves, and acid-resistant apron,
and perform the procedure under a ventilated fume hood
within a 15-second walking distance of an eyewash station. Read the MSDS before performing this procedure.
FUME HAZARD
•
Do not leave water samples in open air for extended periods of
time; the dissolved oxygen concentration will approach 100%
saturation.
•
Normally encountered levels of iron, copper, chromate, nitrite,
nitrate, sulfite, sulfide, chlorine, hypochlorite, hardness, salinity,
dissolved gases, acids, or alkalis will not interfere with the dissolved oxygen determination in fresh water, seawater, or municipal wastewater.
•
No correction is required for temperature, barometric pressure,
or salinity.
•
Excessive alkalinity (pH more than 10), occurring in certain industrial wastes, can cause erroneous results. If you observe this,
have your instructor add 10% hydrochloric acid to the sample to
neutralize it, and repeat the test procedure.
•
Excessive acidity will also cause erroneous results. If the pH of
the sample is less than 2, neutralize with 2% sodium hydroxide
solution and repeat the test procedure.
•
Your instructor may have collected water samples for the class to
use, or you may have to collect your own samples. Collect samples carefully. Do not leave the sample in open air or allow it to
become agitated; a change in gaseous content will develop. Collect surface water samples in narrow-mouthed bottles with caps.
Avoid entraining or dissolving atmospheric oxygen. Use of a
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Kemmerer-type sampler for streams and ponds of moderate
depth is recommended. Bleed the sample from the bottom of the
sampler through a tube extending to the bottom of the sample
bottle. Fill the bottle to overflowing (overflow approximately 10
seconds) and prevent turbulence and formation of bubbles while
filling.
DID YOU KNOW?
The factors that limit primary
productivity in an aquatic
system are usually some
combination of the availability of nutrients, light, and/or
grazing by zooplankton.
•
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Samples should be analyzed for dissolved oxygen immediately after
sampling. Samples may be stored for a few hours after manganous
sulfate solution, alkali-iodide solution, and H2SO4 are added and the
samples mixed. Keep samples out of strong sunlight.
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OBJECTIVES
•
•
•
•
•
•
Measure dissolved oxygen concentration.
Calculate gross productivity, net productivity, and respiration rate.
Demonstrate the importance of carbon and oxygen cycles in
an ecosystem.
Identify physical and biological factors affecting solubility of dissolved gases in aquatic ecosystems.
Measure primary productivity in an aquatic ecosystem.
Demonstrate the effect of light and nutrients on photosynthesis.
MATERIALS
MATERIALS NEEDED PER GROUP
DID YOU KNOW?
Chlorella, known as the
“Jewel of the Orient,” has a
high concentration of vitamins, minerals, amino acids,
nutrients, and enzymes.
Chlorella culture or water sample
Pipet
Microscope slide
Coverslip
Light
Compound microscope
17 Cloth squares
Aluminum foil
7 BOD bottles
Direct-reading titrator
Titration vial
SHARED MATERIALS
Manganous sulfate solution
Alkaline potassium iodide azide
Sulfuric acid
Starch indicator solution
Sodium thiosulfate
PROCEDURE
Wear personal protection equipment: nitrile rubber gloves,
apron, chemical safety goggles.
NOTE
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Your instructor may have collected the water sample in advance. If this is the case, begin with Step 2.
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A. Measurement of Dissolved Oxygen
DID YOU KNOW?
In water, dissolved oxygen
levels that remain below
1-2 mg/l for a few hours can
result in large fish kills.
1.
Thoroughly rinse out a sampling bottle. Remove the cap and
slowly submerge the bottle in the water. Allow the bottle to fill
and remove any air bubbles from the side of the bottle by tapping
on the side. Cap the bottle while it is still submerged. If using a
water sampler, siphon or drain the tube on the sampler to fill a
BOD bottle. Place the siphon or drain hose at the bottom of the
bottle, filling the bottle to overflowing by approximately onethird its volume. Seal the bottle with a cap so that no air pockets
are created and excess water is removed.
2.
Your instructor will assign one or more water temperatures for
your sample: 0°, 20°, or 30°C. You may want to verify the temperature of your sample to ensure that it has reached, and remains at, the desired temperature.
3.
Place your bottles in a shallow pan or similar container to catch
the overflow. Add eight drops of manganous sulfate to the sample bottle with a dropping bottle or pipet. Be sure no air is added.
4.
Add eight drops of alkaline iodide to the sample bottle. Be sure
no air is added. Note that the precipitate manganous hydroxide is
produced immediately.
5.
Cap the bottle and mix by inverting it several times.
6.
Allow the manganous hydroxide precipitate to settle until it is
below the shoulder of the bottle.
7.
Your instructor will add one scoop of acid to the sample bottle,
then will mix by inverting the bottle several times. Note that the
precipitate dissolves. The sample should turn a clear yellow as
free iodine is formed.
8.
Carefully measure out 20 ml of the sample into a titration vial.
Place the cup on top of a white sheet of paper to better see the
color of the sample.
9.
Add eight drops of starch indicator to the 20 ml sample. The
starch solution will change the liquid’s color from yellow to purple. Place the cap on the vial and swirl gently to mix.
10. Carefully fill the titration syringe with sodium thiosulfate working solution. Insert the tip of the titration syringe into the hole in
the vial cap.
11. While continually swirling the sample, titrate the 20 ml sample
with sodium thiosulfate working solution. Titrate one drop at a
time until the color changes from purple to a pale yellow/
colorless solution; this is the titration endpoint where all free iodine has been converted to sodium iodide by the addition of sodium thiosulfate.
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12. Determine the concentration of dissolved oxygen in the sample
by observing how much sodium thiosulfate working solution
was required to convert free iodine.
mg/L Dissolved Oxygen = ml Titrant Used
Record this value in Table 1 in the Analysis section of the lab.
13. The volume of sodium thiosulfate (in ml) used to titrate the 20 ml
sample is approximately equivalent to the concentration of dissolved oxygen (mg/L) in the original sample. Convert the mg/L
of dissolved oxygen to ml/L using the following formula:
mg O2/L x 0.698 = ml O2/L
14. Using the nomograph in the Analysis section and a straightedge
or ruler, estimate the percent saturation of dissolved oxygen in
your sample. Record this value in Table 1 in the Analysis section.
DID YOU KNOW?
Dissolved oxygen concentrations may steadily decline
during the night, when photosynthesis cannot counterbalance the loss of oxygen
through respiration and decomposition. It is lowest right
before dawn, when photosynthesis resumes.
15. Collect class data for all tested samples. Calculate the mean concentration of dissolved oxygen and use the nomograph to estimate the percent oxygen saturation at each of the three temperatures used in the experiment. Record this data in Table 2 in the
Analysis section.
B. Measurement of Primary Productivity
The productivity per square meter of a water column in an aquatic
environment can be measured using the light–dark bottle oxygen
method. In this experiment, the reduction of natural light levels at
various depths will be simulated with screen filters. Temperature is
constant so only a single variable, light intensity, is assessed.
1.
Obtain seven water sample bottles. One bottle will serve as the
initial sample. With a permanent marker, label the bottle “#1 —
Initial”. A second bottle will serve as the dark bottle; label it
“#2 — Dark”. Label the other bottles according to light intensity:
“#3 — 100%”, “#4 — 65%”, “#5 — 25%”, “#6 — 10%”, and
“#7 — 2%”.
2.
Carefully fill each bottle with the water sample: Remove the cap
and slowly submerge the bottle in the water. Allow the bottle to
fill and remove any air bubbles from the side of the bottle by tapping on the side. Cap the bottle while still submerged. If using a
water sampler, siphon or drain the tube on the sampler to fill a
BOD bottle. Place the siphon or drain hose at the bottom of the
bottle, filling the bottle to overflowing by approximately onethird its volume. Seal the bottle with a cap so that no air pockets
are created and excess water is removed.
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3.
Titration:
A technique common in
chemistry laboratories, used
to find the concentration of a
substance by slowly adding a
known amount of another
substance.
Wrap bottle #2 with aluminum foil. Refer to the chart below to determine the number of screens required to create each light intensity level. Stack that number of screens together and wrap them
around the appropriate bottle. Keep the screens in place with tape,
rubber bands, or similar.
Percent Light
Number of
Screens
100
0
65
1
25
3
10
5
2
8
4.
Cap bottles #2 through #7 tightly and lie them down on their sides
under a light source. Keep the overlapping portion of the screens to
the bottom and leave overnight.
5.
Fix the sample in bottle #1 by performing Steps 3 through 7 as described in part A. Keep the #1 bottle at room temperature until you
process the other samples.
6.
Prepare a wet mount of the water sample and observe it under a
compound microscope. Use the General Guide to Aquatic Organisms,
included, to identify the organisms on the wet mounts. On a separate sheet of paper, illustrate and identify the organisms you observed.
7.
The next day, fix bottles #2 through #7 by performing Steps 3
through 7 as described in part A.
8.
After all bottles have been fixed, determine the dissolved oxygen of
all samples by performing Steps 8 through 13 from part A. Record
your results in Table 3 in the Analysis section of the lab.
NOTE
9.
For productivity and respiration studies, dissolved oxygen is
usually reported in milliliters.
Calculate the gross and net productivities and respiration rate of
your samples using the following formulas. Enter your results in
Table 3 in the Analysis section.
Gross Productivity = Light Bottle (ml O2/L) – Dark Bottle (ml O2/L)
Net Productivity = Light Bottle (ml O2/L) – Initial Bottle (ml O2/L)
Respiration Rate = Initial Bottle (ml O2/L) – Dark Bottle (ml O2/L)
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10. Collect the class data and determine both the mean gross productivity and mean net productivity. Enter the values in Table 3 in the
Analysis section.
11. Convert your mean gross productivity data (ml O2) for your samples to carbon productivity (mg C/m3) using the following formulas:
ml O2/L = 0.698 x mg O2/L
mg C/L = 0.536 x ml O2/L
12. To convert liters to meters cubed, divide liters by 0.001. Enter values in Table 3 in the analysis section.
NOTE
Actual answers will vary with each water sample.
C. Productivity Simulation
DID YOU KNOW?
By identifying the organisms
present in a water source, the
water quality can be predicted.
Productivity of a body of water can be estimated by measuring the productivity of water samples and plotting the rates on a depth profile
graph. To create a depth profile, the degree to which the body of water
attenuates (reduces) light must be known. Usually these data are generated by photometer readings. An estimate of the compensation level
(ZSD) is done using a Secchi disk.
Data was collected from two lakes:
Lake 1
Percent of Incident Light
100%
65%
25%
10%
2%
Depth (meters)
0.0
0.5
1.5
2.5
4.0
Lake 2
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Percent of Incident Light
Depth (meters)
100%
65%
25%
10%
2%
0.0
1.5
4.0
7.0
11.0
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1.
Using the Gross Productivity data (mg C/m3) from Table 3 in the
Analysis section, simulate primary productivity for the two data
sets above.
2.
On graph paper, plot this converted data at the depth at which
they could occur in each of these lakes. Assume that the respiration rate is the same for all depths.
DID YOU KNOW?
A dissolved oxygen probe
may be used to determine the
level of dissolved oxygen in a
water sample.
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Name:
Group:
Date:
WARD’S
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Dissolved Oxygen & Primary Productivity
Lab Activity
ANALYSIS
Nomograph
Water Temperatures C
5
0
15
10
20
25
30
n
atio
120
140
%
ur
Sat
100
80
60
50
40
30
20
10
0
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
Oxygen mg/l (ppm)
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Table 1
Dissolved Oxygen Concentration
Lab Group Sample
Temperature
Dissolved Oxygen (mg/L)
% Saturation
Table 2
Dissolved Oxygen Concentration
Class Sample
Temperature
Dissolved Oxygen (mg/L)
% Saturation
0
20
30
Table 3
Gross and Net Productivity/Respiration Rate
Class Sample
Gross
Productivity
Net
Productivity
Gross Productivity
(mg C/m3)
Initial
——
——
——
Dark
——
——
——
Percent Light
Dissolved
Oxygen (mg/L)
100%
65%
25%
10%
2%
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General Guide To Aquatic Organisms
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AP Biology Lab 12
Dissolved Oxygen & Primary Productivity
Lab Activity
ASSESSMENT
1.
How does temperature affect the solubility of oxygen in water?
2.
How does salinity affect the solubility of oxygen in water?
3.
Would you expect to find higher dissolved oxygen content in a body of water in winter or summer?
4.
Discuss how each of the following factors could influence the dissolved oxygen concentration of a
body of water.
Wind:
Temperature:
Altitude:
5.
Do you think it would be wise to stock a pond with game fish if it had a dissolved oxygen content of
3 ppm? Why or why not?
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6.
Below is a graph of dissolved oxygen levels in a body of water. Represented on the Y-axis is the
amount of dissolved oxygen in mg/liter. The X-axis is unlabeled but represents a period of time. Examine the graph and place time values on the X-axis. Explain why you chose the time values and
the event or events that occurred over that period.
O2 mg/L
12
11
10
9
8
7
6
100% Saturation
Time
7.
In part B of the experiment, were any of the samples light-limited? Why?
8.
Based on your analysis of the lakes presented in part C of the lab, which lake is more productive?
9.
What is used as the basis for measuring primary productivity?
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10. In the Venn diagram below, list at least three similarities and three differences between photosynthesis and respiration.
Photosynthesis
Respiration
11. Below is a list of steps involved in the Winkler method. First, put the steps in their proper order for
the determination of dissolved oxygen (assume a water sample has already been collected) and then
describe what each step does in the procedure.
Addition of alkaline iodide, titration with sodium thiosulfate, addition of manganous sulfate, addition of sulfamic acid, addition of starch indicator
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12. You own a popular fishing resort on a local lake in your area. The town wants to build a sewage
treatment plant that will discharge into a large stream that feeds into the lake. At a local board meeting, you must explain to the town council how this will impact your business. Do so in the
space below.
13. Using the library or internet, select a pollutant of an aquatic ecosystem. Research the effects that this
pollutant may have on the ecosystem and present your findings to the class.
14. Divide the class in half. One half of the class should defend the following statement and the other
half of the class should refute it. Work together as a group to formulate your arguments and then
debate the statement.
“Because of run-off during storms, commercial fertilizers and herbicides should be banned.”
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