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ab102530
Peróxido de glutation
Kit de ensayo (colorimétrico)
Instrucciones de uso
Para la medición rápida, sensible y precisa de la actividad de la
glutatión peroxidasa en varias muestras.
Ver hoja de datos del kit: www.abcam.com/ab102530
(utilizarwww.abcam.cn/ab102530 para China, owww.abcam.co.jp/ab102530 para Japón)
Este producto es solo para uso de investigación y no está diseñado para uso de
diagnóstico.
Versión 11 Última actualización 11 de abril de 2019
Tabla de contenido
INTRODUCCIÓN
1. ANTECEDENTES
2. RESUMEN DEL ENSAYO
2
3
INFORMACIÓN GENERAL
3. PRECAUCIONES
4. ALMACENAMIENTO Y ESTABILIDAD
5. MATERIALES SUMINISTRADOS
6. MATERIALES NECESARIOS, NO SUMINISTRADOS
7. LIMITACIONES
8. CONSEJOS TÉCNICOS
4
4
5
5
6
7
PREPARACIÓN DEL ENSAYO
9. PREPARACIÓN DE REACTIVOS
10. PREPARACIÓN ESTÁNDAR
11. PREPARACIÓN DE MUESTRAS
8
9
10
PROCEDIMIENTO DE ENSAYO y DETECCIÓN
12. PROCEDIMIENTO DE ENSAYO y DETECCIÓN
12
ANÁLISIS DE LOS DATOS
13. CÁLCULOS
14. DATOS TÍPICOS
14
15
RECURSOS
15. PROCEDIMIENTO DE ENSAYO RÁPIDO
16. RESOLUCIÓN DE PROBLEMAS
17. Preguntas frecuentes
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17
18
20
1
18. INTERFERENCIAS
19. NOTAS
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21
22
2
INTRODUCCIÓN
1.ANTECEDENTES
Kit de ensayo de glutatión peroxidasa (colorimétrico) (ab102530), GPx reduce el
hidroperóxido de cumeno mientras oxida el GSH a GSSG. El GSSG generado se
reduce a GSH con el consumo de NADPH por GR. La disminución de NADPH
(medida fácilmente a 340 nm) es proporcional a la actividad de GPx. El ensayo
se puede utilizar para medir todas las peroxidasas dependientes de glutatión
en plasma, lisados de eritrocitos, homogeneizados de tejidos y lisados de
células con una sensibilidad de detección de ~0,5 mU/ml de GPx en las
muestras.
La familia de enzimas glutatión peroxidasa (GPx) juega un papel importante en
la protección de los organismos contra el daño oxidativo. GPx convierte el
glutatión reducido (GSH) en glutatión oxidado (GSSG) mientras reduce los
hidroperóxidos lipídicos a sus correspondientes alcoholes o peróxido de
hidrógeno libre a agua. Se han encontrado varias isoenzimas en diferentes
localizaciones celulares y con diferente especificidad de sustrato. Los niveles
bajos de GPx se han correlacionado con trastornos relacionados con los
radicales libres.
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3
INTRODUCCIÓN
2.RESUMEN DEL ENSAYO
Preparación de la curva estándar
preparación de la muestra
Agregue la mezcla de reacción e incube a temperatura ambiente durante 15 minutos.
Mida la densidad óptica (OD 340 nm)
Agregar hidroperóxido de cumeno
Mida la densidad óptica (OD340 nm) en un modo cinético
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4
INFORMACIÓN GENERAL
3.PRECAUCIONES
Lea atentamente estas instrucciones antes de comenzar el ensayo.
Todos los componentes del kit han sido formulados y sometidos a pruebas de control de calidad para
funcionar satisfactoriamente como un kit. Las modificaciones a los componentes o procedimientos del
kit pueden resultar en una pérdida de rendimiento.
4.ALMACENAMIENTO Y ESTABILIDAD
Guarde el kit a -20ºC en la oscuridad inmediatamente después de recibirlo. El kit tiene un tiempo
de almacenamiento de 1 año a partir de la recepción, siempre que los componentes no hayan
sido reconstituidos.
Consulte la lista de materiales suministrados para conocer las condiciones de almacenamiento de los
componentes individuales. Observe las condiciones de almacenamiento para los componentes
preparados individuales en la sección 5.
Alícuota de los componentes en volúmenes de trabajo antes de almacenarlos a la
temperatura recomendada.Los componentes reconstituidos son estables
durante 2 meses.
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5
INFORMACIÓN GENERAL
5.MATERIALES SUMINISTRADOS
Articulo
Cantidad
Almacenamiento
Almacenamiento
Condición
Condición
Preparación)
Preparación)
(Antes
(Después
Tampón de ensayo de glutatión
peroxidasa
50ml
- 20°C
- 20ºC*
NADPH (liofilizado)
1 vial
- 20°C
4ºC o -20ºC*
glutatión reductasa
1 vial
- 20°C
4ºC o -20ºC*
Glutatión (GSH; liofilizado)
1 vial
- 20°C
4ºC o -20ºC*
hidroperóxido de cumeno
1 vial
- 20°C
4ºC o -20ºC*
Control positivo de glutatión
peroxidasa (liofilizado)
1 vial
- 20°C
4ºC o -20ºC*
*Consulte la Sección 9 (Preparación de reactivos) para obtener más detalles.
6.MATERIALES REQUERIDOS, NO SUMINISTRADOS
Estos materiales no están incluidos en el kit, pero serán necesarios para
realizar correctamente este ensayo:
-
Agua MilliQ u otro tipo de agua bidestilada (ddH2O) PBS
-
Lector de microplacas colorimétricas: equipado con filtro para placa de 96 pocillos de
-
OD340 nm: placas transparentes para ensayo colorimétrico
-
Microcentrífuga
-
Pipetas y puntas de pipeta
-
Bloque térmico o baño de
-
agua Vortex
-
Dounce homogeneizador o pistilo (si usa tejido)
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6
INFORMACIÓN GENERAL
7.LIMITACIONES
-
Kit de ensayo diseñado para uso exclusivo en investigación. No debe utilizarse en los procedimientos de
diagnóstico.
-
No utilice el kit o los componentes si ha superado la fecha de caducidad que figura en las
etiquetas del kit.
-
No mezcle ni sustituya reactivos o materiales de otros proveedores o lotes de kits.
Los kits se someten a pruebas de control de calidad como un conjunto de
componentes y no se puede garantizar el rendimiento si se utilizan por separado o
se sustituyen.
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7
INFORMACIÓN GENERAL
8.CONSEJOS TÉCNICOS
-
Este kit se vende en función del número de pruebas. Una 'prueba' simplemente
se refiere a un único pocillo de ensayo. El número de pocillos que contienen
muestra, control o estándar variará según el producto. Revise el protocolo por
completo para confirmar que este kit cumple con sus requisitos. Póngase en
contacto con nuestro personal de soporte técnico si tiene alguna pregunta.
-
Mantenga las enzimas, los componentes termolábiles y las muestras en hielo durante el
ensayo.
-
Asegúrese de que todos los tampones y soluciones estén a temperatura ambiente antes
de comenzar el experimento.
-
Las muestras que generan valores superiores al estándar más alto deben
diluirse aún más en los tampones de dilución de muestra apropiados.
-
Evite la formación de espuma o burbujas al mezclar o reconstituir los
componentes.
-
Evite la contaminación cruzada de muestras o reactivos cambiando las puntas
entre las adiciones de muestra, estándar y reactivo.
-
Asegúrese de que las placas estén correctamente selladas o cubiertas durante los pasos de
incubación.
-
Asegure la eliminación completa de todas las soluciones y tampones de los tubos o placas
durante los pasos de lavado.
-
Asegúrese de tener el tipo correcto de placa para su método de
detección elegido.
-
Asegúrese de que el bloque de calor/baño de agua y el lector de microplacas estén
encendidos.
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8
PREPARACIÓN DEL ENSAYO
9.PREPARACIÓN DE REACTIVOS
-
Centrifugar brevemente los viales pequeños a baja velocidad antes de
abrirlos. 9.1Tampón de ensayo de glutatión peroxidasa:
Listo para usar como se suministra. Calentar a temperatura ambiente antes de
usar. Conservar a -20ºC.
9.2Estándar NADPH:
Reconstituir con 500 µL de dH2O para obtener una solución estándar de
NADPH de 40 mM. Estándar de alícuota para que tenga suficiente para
realizar el número deseado de ensayos. Almacene a -20 °C durante 1
mes oa 4 °C durante 1 semana.
9.3Glutatión reductasa:
Diluya con 220 µL de tampón de ensayo. Alícuota de enzima para que
tengas suficiente para realizar el número deseado de ensayos.
Almacenar a -20°C por 1 mes oa 4ºC por 1 semana. Mantener en hielo
durante el uso.
9.4Glutatión (GSH):
Reconstituir con 220 µL de tampón de ensayo. Haga alícuotas de
GSH para que tenga suficiente para realizar el número deseado de
ensayos. Almacenar a -20°C por 1 mes oa 4ºC por 1 semana.
9.5Hidroperóxido de cumeno:
Diluir con 1,25 ml de tampón de ensayo. Alícuota para que tenga
suficiente para realizar el número deseado de ensayos. tienda en
- 20°C durante 1 mes oa 4ºC durante 1 semana.
9.6Glutatión Peroxidasa (Control Positivo):
Reconstituir con 100 µL de tampón de ensayo. Control positivo en
alícuotas para que tenga suficiente para realizar el número deseado de
ensayos Almacene a -20 °C durante 1 mes oa 4 °C durante 1 semana.
Mantener en hielo durante el uso.
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9
ENSAYO PRE
PREPARACIÓN DEL ENSAYO
10PREPARACIÓN ESTÁNDAR
-
Prepare siempre un nuevo conjunto de estándares para cada uso.
-
La solución estándar diluida es inestable y debe usarse dentro de las 4
horas.
10.1 Prepare el estándar de NADPH 1 mM diluyendo 25 µL de la solución
estándar de NADPH 40 mM en 975 µL de dH2o
10.2 Con el estándar de NADPH 1 mM, prepare la dilución de la curva estándar
como se describe en la tabla en una microplaca o tubos de microcentrífuga:
Estándar
Volumen de
tampón de ensayo
(µL)
Volumen final
estándar en
pozo (µL)
Terminar [NADPH] en
#
Estándar (µL)
bien
1
0
300
100
0 nmol/pocillo
2
60
240
100
20 nmol/pocillo
3
120
180
100
40 nmol/pocillo
4
180
120
100
60 nmol/pocillo
5
240
60
100
80 nmol/pozo
6
300
0
100
100 nmol/pocillo
Cada dilución tiene suficiente cantidad de estándar para configurar lecturas
duplicadas (2 x 100 µL).
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10
ENSAYO PRE
PREPARACIÓN DEL ENSAYO
11PREPARACIÓN DE LA MUESTRA
Información general de la muestra:
-
Recomendamos realizar varias diluciones de su muestra para garantizar
que las lecturas estén dentro del rango de valores estándar.
-
Le recomendamos que utilice muestras frescas. Si no puede realizar el ensayo
al mismo tiempo, le sugerimos que complete el paso de preparación de la
muestra antes de almacenar las muestras. Alternativamente, si eso no es
posible, le sugerimos que congele rápidamente las células o el tejido en
nitrógeno líquido después de la extracción y almacene las muestras
inmediatamente a -80 °C. Cuando esté listo para analizar sus muestras,
descongélelas en hielo. Sin embargo, tenga en cuenta que esto podría afectar
la estabilidad de sus muestras y que las lecturas pueden ser más bajas de lo
esperado.
11.1Muestras de células (adherentes o en suspensión):
11.1.1 Cosechar la cantidad de células necesarias para cada ensayo (inicial
recomendación = 2 x 106células).
11.1.2 Lave las células con PBS frío.
11.1.3 Resuspender las células en 200 µL de tampón de ensayo frío.
11.1.4 Homogeneice las células rápidamente pipeteando hacia arriba y hacia abajo varias
veces, en hielo.
11.1.5 Centrifugar 15 minutos a 4 °C a 10 000 g usando una
microcentrífuga fría para eliminar cualquier material insoluble.
11.1.6 Recoja el sobrenadante y transfiéralo a un tubo limpio.
11.1.7 Mantener en hielo.
11.2Muestras de tejido:
11.2.1 Coseche la cantidad de tejido necesaria para cada ensayo
(recomendación inicial = 100 mg).
11.2.2 Lave el tejido en PBS frío.
11.2.3 Vuelva a suspender el tejido en 200 µL de tampón de ensayo frío.
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11
ENSAYO PRE
PREPARACIÓN DEL ENSAYO
11.2.4 Homogeneice el tejido con un homogeneizador Dounce sobre
hielo, con 10 a 15 pases.
11.2.5 Centrifugar 15 minutos a 4 °C a 10 000 g usando una
microcentrífuga fría para eliminar cualquier material insoluble.
11.2.6 Recoja el sobrenadante y transfiéralo a un tubo limpio.
11.2.7 Conservar en hielo.
11.3Eritrocitos:
11.3.1 Homogeneice 200 µL de eritrocitos en 200 µL de tampón de ensayo
frío.
11.3.2 Centrifugar 15 minutos a 4°C a 10.000xgutilizando una
microcentrífuga fría para eliminar cualquier material insoluble.
11.3.3 Recoja el sobrenadante y transfiéralo a un tubo limpio.
11.3.4 Mantener en hielo.
11.4Muestras de plasma y suero:
Las muestras de suero se pueden analizar directamente agregando la muestra a los
pocillos de la microplaca. Las muestras se pueden almacenar a -80ºC.
NOTA:Sugerimos usar diferentes volúmenes de muestra para asegurar
que las lecturas estén dentro del rango de la curva estándar.
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12
PROCEDIMIENTO DE ENSAYO y DETECCIÓN
12PROCEDIMIENTO DE ENSAYO y DETECCIÓN
● Equilibre todos los materiales y reactivos preparados a temperatura
ambiente antes de su uso.
● Se recomienda analizar todos los estándares, controles y
muestras por duplicado.
12.1
Configure los pozos de reacción:
- Pocillos estándar = diluciones estándar de 100 µL.
- Pocillos de muestra = 2 muestras de 50 µL (ajuste el volumen a 50 µL/
pocillo con tampón de ensayo).
-
(Opcional) Control positivo = 5 – 10 µL del control positivo GPx
(ajuste el volumen a 50 µL/pocillo con tampón de ensayo).
-
Pocillos de control de reactivos = 50 µL de tampón de ensayo
12.2
Mezcla de reacción:
Inmediatamente antes del uso, prepare la mezcla de reacción para cada
reacción:
Componente
colorimétrico
Mezcla de reacción (µL)
tampón de ensayo
33
Solución de NADPH 40 mM
3
solución GR
2
solución GSH
2
Mezcle suficientes reactivos para el número de ensayos (muestras, control
positivo y control de reactivos) que se van a realizar. Prepare una mezcla
maestra de Reaction Mix para garantizar la consistencia.
12.3 Agregue 40 µL de mezcla de reacción a la muestra, control(es) positivo(s) y
pocillos de control de reactivo.
12.4 Mezcle bien e incube a temperatura ambiente durante 15 minutos para
eliminar todo el GSSG de las muestras.
NOTA: Mida la DO 340 nm antes de agregar hidroperóxido de
cumeno.Si la OD a 340 nm es inferior a 1,0, agregue más NADPH
para asegurarse de que haya suficiente NADPH en el sistema de
reacción. 1 µL de NADPH 40 mM dará ~0.5 OD a 340 nm.
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13
ENSAYO PRE
PROCEDIMIENTO DE ENSAYO y DETECCIÓN
12.5 Agregue 10 µL de solución de hidroperóxido de cumeno, solo a los pocillos
de muestra, control positivo y control de reactivo, para iniciar la
reacción de glutatión peroxidasa (GPx). Mezclar bien.
12.6 Salida de medida (A1) en un lector de microplacas a OD340 nm en T1.
12.7 Incubar a 25ºC durante 5 min (o más si la actividad GPx es
bajo). Proteger de la luz.
12.8 Salida de medida (A2) en un lector de microplacas a OD340 nm en
T2.
NOTA:si un1la lectura es demasiado baja (<0.7), significa que hay
demasiado GPx o demasiado GSSG en la muestra. Es posible que deba
diluir las muestras o eliminar el GSSG de su muestra mediante
métodos, como la diálisis de la muestra o el uso de filtros giratorios
(ab93349) para eliminar el GSSG.
NOTA:Imprescindible leer A.1y un2en el rango lineal de la
reacción. Será más preciso si lee la cinética de la reacción.
Luego elige A1y un2en el rango lineal de la reacción.
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14
13CÁLCULOS
-
Las muestras que produzcan señales mayores que las del estándar
más alto deben diluirse más en un tampón apropiado y volver a
analizarse, luego multiplicar la concentración encontrada por el factor
de dilución apropiado.
-
Por razones estadísticas, recomendamos que cada muestra se analice
con un mínimo de dos repeticiones (duplicados).
13.1 Promedie la lectura duplicada para cada estándar y muestra.
13.2 Restar el valor medio de absorbancia del blanco (estándar
# 1) de todas las lecturas estándar y de muestra. Esta es la
absorbancia corregida.
13.3 Grafique los valores de absorbancia corregidos para cada estándar en
función de la concentración final de NADPH.
13.4 Dibuje la mejor curva suave a través de estos puntos para construir la curva
estándar. La mayoría de los programas de lectura de placas o
Excel puede trazar estos valores y ajustar la curva. Calcule la ecuación de la
línea de tendencia en función de los datos de su curva estándar (utilice la
ecuación que proporcione el ajuste más preciso).
13.5 Extrapolar lecturas de muestra de la curva estándar trazada
usando la siguiente ecuación:
Δ _340 = ((
1-
2) - (
1-
2))
13.6 Aplicar el Δ_A340nma la curva estándar de NAPDH para obtener la
cantidad B de NADPH:
(
)
= Δ _340 ‒
13.7 La concentración de GPx en las muestras de prueba se calcula como
(nmol/min/mL = mU/mL):
(
=
( 2‒ 1)∗
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)
∗
15
Donde:
B = cantidad de NADPH que disminuyó entre T1y T2
(en nmol).
T1= Hora de la primera lectura (A1) (minutos). T2=
Hora de la segunda lectura (A2) (minutos).
V = Volumen de muestra pretratada añadida al pocillo de reacción (ml).
D = Factor de dilución de la muestra.
Definición de unidad:Una unidad se define como la cantidad de
enzima que provocará la oxidación de 1,0 µmol de NADPH a NADP.+
bajo las condiciones del kit de ensayo por minuto a 25°C.
14DATOS TÍPICOS
CURVA ESTÁNDAR TÍPICA–Datos proporcionados parafines de
demostración solamente. Se debe generar una nueva curva estándar para
cada ensayo realizado.
Figura 1. Curva típica de calibración estándar de NADPH usando lectura
colorimétrica.
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dieciséis
Figura 2: Actividad de glutatión peroxidasa medida en lisados celulares que muestra la
cantidad (nmol) por 1 millón de células después de 10 minutos de incubación
Figura 3:Actividad de glutatión peroxidasa medida en fluidos biológicos que muestra la
cantidad (nmol) por 1 ml después de 10 minutos de incubación.
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17
15.PROCEDIMIENTO DE ENSAYO RÁPIDO
NOTA: Este procedimiento se proporciona como una referencia rápida para
usuarios experimentados. Siga el procedimiento detallado cuando realice el
ensayo por primera vez.
-
Preparar estándar NADPH, glutatión reductasa, GSH,
hidroperóxido de cumeno, control positivo GPx (alícuota si es
necesario); preparar el equipo.
-
Prepare la curva estándar adecuada.
-
Configure la placa para pocillos estándar (100 µL) y muestras (50 µL), control positivo
(50 µL) y control de reactivo (50 µL), por duplicado. Encuentre las diluciones óptimas
para adaptarse a las lecturas de la curva estándar.
-
Preparar mezcla de reacción (Número de muestras + estándares + 1).
Componente
tampón de ensayo
-
colorimétrico
Mezcla de reacción (µL)
33
Solución de NADPH 40 mM
3
solución GR
2
solución GSH
2
Añada 40 µL de la mezcla de reacción solo a los pocillos de muestra, control positivo y
control de reactivo.
-
Incube la placa a temperatura ambiente
-
durante 15 min. Lea a OD 340 nm.
-
Agregue 10 µL de solución de hidroperóxido de cumeno solo a los pocillos de
muestra, control positivo y control de reactivo.
-
Salida de medida (A1) en un lector de microplacas en T1a DO340 nm.
-
Incubar a 25ºC durante 5 min, protegido de la luz (o más). Salida de
-
medida (A2) en un lector de microplacas en T2a DO340 nm.
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18
dieciséis.SOLUCIÓN DE PROBLEMAS
Problema
Porque
Uso de tampón enfriado con hielo
Ensayo no
Placa leída en
Fluorométrico: pocillos negros/transparentes
Muestras de células/tejidos
no homogeneizado
completamente
Muestras utilizadas después
múltiples libres/descongelados
ciclos
Uso de viejos o
almacenado inapropiadamente
muestras
Presencia de
sustancia que interfiere
en la muestra
mal descongelado
Más bajo/
Más alto
lecturas en
muestras y
Estándares
Compruebe la longitud de onda y el filtro
Uso de un 96- diferente
buen plato
desproteinizado (si
indicado en el protocolo)
lecturas
temperatura
ajustes del instrumento
Muestras no
errático
Los tampones deben estar en la habitación.
longitud de onda incorrecta
trabajando
Muestra con
Solución
componentes
Permitir que los reactivos
sentarse por tiempos prolongados
sobre hielo
Incubación incorrecta
tiempos o temperaturas
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Colorimétrico: placas transparentes
placa inferior
Utilice el protocolo de precipitación PCA para
desproteinización
Use el homogeneizador Dounce,
aumente el número de golpes
Muestras en alícuotas y congeladas si
es necesario usarlas varias veces
Utilice muestras frescas o guárdelas a -80°C (después
de congelarlas instantáneamente en líquido)
nitrógeno) hasta su uso
Comprobar el protocolo de sustancias
que interfieren; desproteinizar muestras
Descongele todos los componentes por completo
y mezclar suavemente antes de usar
Siempre descongele y prepare fresco
mezcla de reacción antes de usar
Verifique los tiempos y temperaturas de
incubación correctos en el protocolo
19
Problema
Porque
Solución
Errores de pipeteo en
Evite pipetear volúmenes pequeños (<
5 µL) y prepare una mezcla maestra
estándar o reacción
Estándar
las lecturas hacen
no seguir un
patrón lineal
mezcla
burbujas de aire formadas en
bien
El stock estándar está en
incorrecto
concentración
Medido en incorrecta
longitud de onda
imprevisto
resultados
Las muestras contienen
entrometido
sustancias
Lecturas de muestra
encima/debajo del
rango lineal
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cuando sea posible
Pipetear suavemente contra la pared de
los tubos
Consulte siempre las diluciones en
protocolo
Verifique el equipo y la configuración del filtro
Solucionar problemas si interfiere con
el kit
Concentrar/diluir la muestra para que sea
dentro del rango lineal
20
17Preguntas más frecuentes
¿Cuál es la detección mínima de este kit?
El ensayo tiene una sensibilidad de detección de 0,5 mU/ml de glutatión
peroxidasa en las muestras.
¿Se puede utilizar este kit con plasma y sangre entera?
El protocolo contiene instrucciones para los eritrocitos. La sangre completa se
puede procesar de manera similar. El plasma se puede diluir en un rango y
luego la dilución que da lecturas dentro del rango lineal de la curva estándar se
puede usar para el ensayo.
¿Cuál es el nivel de actividad del control positivo? ¿Cómo podemos aumentar
su valor para que sea comparable con nuestras muestras?
El control positivo es solo una muestra de referencia. Mientras los valores
estén dentro del rango de la curva estándar, está bien. El control positivo
no se utiliza para comparar valores con las muestras. El control positivo se
proporciona para validar que todos los componentes del ensayo
funcionan.
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21
18INTERFERENCIAS
Estos productos químicos o materiales biológicos causarán interferencias en este ensayo, lo que hará
que los resultados se vean comprometidos o que falle por completo.
-
SDS: desnaturalizará las proteínas y afectará la actividad enzimática. El búfer
RIPA contiene SDS.
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22
19NOTAS
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23
Reino Unido, UE y resto del mundo
Correo electrónico: técnico@abcam.com | Teléfono: +44-(0)1223-696000
Austria
Correo electrónico: wissenschaftlicherdienst@abcam.com | Teléfono: 019-288-259
Francia
Correo electrónico: supportcientifique@abcam.com | Teléfono: 01-46-94-62-96
Alemania
Correo electrónico: wissenschaftlicherdienst@abcam.com | Teléfono: 030-896-779-154
España
Correo electrónico: soportecientífico@abcam.com | Teléfono: 911-146-554
Suiza
Correo electrónico: técnico@abcam.com
Teléfono (alemán): 0435-016-424 | Tel (francés): 0615-000-530
Estados Unidos y América Latina
Correo electrónico: us.technical@abcam.com | Teléfono: 888-77-ABCAM (22226)
Canadá
Correo electrónico: ca.technical@abcam.com | Teléfono: 877-749-8807
China y Asia Pacífico
Correo electrónico: hk.technical@abcam.com | Teléfono: 400 921 0189 / +86 21 2070 0500
Japón
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